Lékařský expert článku
Nové publikace
Diagnostika herpesu
Naposledy posuzováno: 07.07.2025

Veškerý obsah iLive je lékařsky zkontrolován nebo zkontrolován, aby byla zajištěna co největší věcná přesnost.
Máme přísné pokyny pro získávání zdrojů a pouze odkaz na seriózní mediální stránky, akademické výzkumné instituce a, kdykoli je to možné, i klinicky ověřené studie. Všimněte si, že čísla v závorkách ([1], [2] atd.) Jsou odkazy na tyto studie, na které lze kliknout.
Pokud máte pocit, že některý z našich obsahů je nepřesný, neaktuální nebo jinak sporný, vyberte jej a stiskněte klávesu Ctrl + Enter.
Diagnóza herpes viru je založena na klasické izolaci viru na citlivých buněčných kulturách, imunofluorescenčních a sérologických metodách, kolposkopickém vyšetření a použití moderních molekulárně biologických metod (PCR, dot hybridizace), které umožňují diagnostikovat celou skupinu herpes virů, včetně typů HHV-6 a HHV-7.
Laboratorní diagnostické metody pro herpetickou infekci
Hlavní metody zaměřené na izolaci HSV nebo detekci virových částic a/nebo jejich složek |
Pomocné metody zaměřené na detekci protilátek proti HSV v biologických tekutinách lidského těla |
|
|
Bylo prokázáno, že u 76 % pacientů je genitální herpes (GH) způsoben virem HSV-2 a u 24 % virem HSV-1. GH se jako monoinfekce vyskytl pouze u 22 % pacientů, přičemž v 78 % případů byly zjištěny mikrobiální asociace. U 46 % jedinců byla zjištěna parazitocenóza způsobená dvěma patogeny, včetně chlamydií zjištěných ve 40 % případů. Gardnerella, Trichomonas a gonokoky byly v nátěrech detekovány méně často.
U 27 % pacientů byla parazitocenóza zastoupena třemi patogeny, u 5,2 % čtyřmi patogeny. Nejčastěji byla zaznamenána kombinace chlamydií s gardnerellou a plísněmi Candida. Tato data potvrzují potřebu důkladného bakteriologického vyšetření pacientů s GH za účelem identifikace kombinací patogenních agens, jakož i hloubkové studie patogeneze smíšených infekcí urogenitálního traktu, což umožní diferencovanou komplexní terapii herpes infekce.
Materiály studované pro izolaci HSV v závislosti na lokalizaci herpetických lézí
Lokalizace |
|
Seškrábání buněk |
Mozkomíšní mok |
Bronchiální aspirát |
Biopsie |
Krev |
|||
1 |
2 |
3 |
4 |
||||||
Kůže |
+ |
+ |
|||||||
Oči |
+ |
+ |
|||||||
Pohlavní orgány |
+ |
+ |
|||||||
Anus |
+ |
+ |
+ |
||||||
Ústa |
+ |
+ |
+ |
||||||
CNS |
+ |
+ |
+ |
+ |
|||||
Plíce |
+ |
+ |
+ |
||||||
Játra |
+ |
+ |
|||||||
Vrozený |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
Metody laboratorní diagnostiky cytomegalovirové infekce
Metody |
Čas potřebný k získání výsledků |
Poznámky |
VIROLOGICKÉ |
||
Elektronová mikroskopie |
3 hodiny |
Není moc přístupné |
Izolace viru v buněčné kultuře (VCI) |
4–20 dní |
Standardní, |
Imunofluorescenční barvení časné AG pomocí monoklonálních protilátek |
6 hodin |
Méně |
CYTOLOGICKÉ |
2–3 hodiny |
Méně |
SÉROLOGICKÉ |
||
RSC |
2 dny |
Norma |
RGA |
1 den |
Náročná práce |
ÚTES |
6 hodin |
Jednoduché, |
NRIF |
6 hodin |
Obtížný |
RIMP |
6 hodin |
Obtížný |
ELISA (IgM, DO) |
6 hodin |
Rychlé, jednoduché |
Imunoblot |
6 hodin |
Drahý |
MOLEKULÁRNÍ BIOLOGICKÉ |
||
MG |
5–7 dní |
Drahé, |
PCR |
3 hodiny |
Drahý |
Metody diagnostiky viru herpes zoster
|
Laboratorní |
NEPŘÍMÝ |
|
Výběr |
Tkáňové kultury, kuřecí embrya, laboratorní zvířata, kokultivace s permisivními buňkami nebo pomocnými viry |
Identifikace izolátů |
Neutralizační reakce, RSC, IF, PIEF, precipitační reakce izolátů, aglutinace, IF |
ŘÍDIT |
|
Cytologie |
Nátěry: barevná imunofluorescence |
Histologie |
Patomorfologie buňky |
Struktura |
Embryonální mikroskopie, imunoelektronová mikroskopie |
Stanovení antigenů |
IF, PIEF, RIM, IFA |
Stanovení lokální produkce protilátek |
Ig M, Ig G, Ig A: ELISA, RIA |
Molekulárně biologické přístupy |
Molekulární hybridizace, PCR |
Laboratorní diagnostika infekce způsobené virem herpes zoster
Diagnostické |
Metody |
Očekávané výsledky |
Akutní primární infekce |
1 |
Detekce do 2 hodin |
2 |
Hladiny protilátek pomalu stoupají |
|
3 |
Projevuje se 3 dny po infekci |
|
Akutní |
1 |
Detekce UUU po 2 hodinách |
2 |
Hladiny protilátek pomalu stoupají |
|
4 |
Objeví se 4 dny po objevení vyrážky |
- stanovení vezikul VEGF v kapalině;
- sérologie: CSC, ELISA, zaměřená na detekci
- sérologie: ELISA zaměřená na detekci IgM;
- sérologie: ELISA zaměřená na detekci IgA, IgM.
Metody pro indikaci imunitní odpovědi na infekci virem herpes zoster
Přístup |
Metoda |
Detekce zvýšení titru protilátek ve druhém séru |
RSK, RTGA, RPGA, IF neutralizační reakce, RIM, ELISA |
Detekce specifických protilátek třídy Ig G a Ig A v prvním vzorku séra |
ELISA, IF, RIM, latexová aglutinace |
Interpretace výsledků sérologického vyšetření sér pacientů na herpesvirové infekce (ELISA)
Název |
Průměrné prahové hodnoty pro infekce |
|
Výsledky analýzy |
Výklad |
|
Cytomegalie Anti-CMV IgG (1-20 U/ml) Anti-CMV IgM (100–300 %) |
Pozitivní 1–6 Pozitivní 6–10 Pozitivní >10 |
Remise |
Herpes simplex 1, 2 sérotypy |
Pozitivní 100–400 Pozitivní 400–800 Pozitivní >800 |
Remise |
Tabulka uvádí hlavní metody laboratorní diagnostiky herpesvirových infekcí a také doporučené biologické materiály, které se vyšetřují při izolaci HSV, s přihlédnutím k lokalizaci herpetických lézí.
Spolehlivá izolace virů herpes simplex a CMV infekcí citlivých buněčných kultur. Během virologického vyšetření 26 pacientů v období relapsu byl tedy HSV izolován na citlivé buněčné kultuře Vero ve 23 případech (88,4 %). Infikované kultury vykazovaly obraz cytopatického působení typického pro HSV - tvorbu mnohojaderných obrovských buněk nebo akumulaci zaoblených a zvětšených buněk ve formě shluků. V 52,1 % případů bylo možné detekovat ložiska cytopatického působení viru již 16–24 hodin po infekci. Po 48–72 hodinách inkubace infikovaných kultur se procento materiálů způsobujících specifickou destrukci buněk zvýšilo na 87 %. A pouze ve 13 % případů byly pozitivní výsledky detekovány 96 hodin po infekci nebo déle, nebo při opakovaném pasážování.
Metody laboratorní diagnostiky generalizované herpes infekce
Hlavní metody zaměřené na detekci (izolaci) herpesvirů, jejich částic a jejich složek |
Pomocné metody zaměřené na detekci protilátek proti herpes virům v biologických tekutinách, detekce enzymatických posunů v krevním séru |
Izolace herpesvirů na citlivých buněčných a zvířecích kulturách. |
Neutralizační test |
K diagnostice infekční mononukleózy (infekce způsobené virem EBV) se používají sérologické metody. Používá se Paulova-Bunnelova reakce s erytrocyty berana, diagnostický titr 1:28 nebo vyšší v jednom testu krevního séra nebo 4násobné zvýšení protilátek při vyšetření párových sér. Používá se Hoffova-Bauerova reakce se 4% suspenzí formalinizovaných koňských erytrocytů. Výsledek se bere v úvahu po 2 minutách; u infekční mononukleózy je reakce vysoce specifická.
V současné době se vyvíjí metoda enzymatické imunoanalýzy (EIA) pro diagnostiku infekční mononukleózy. V tomto případě se protilátky IgG a IgM v séru pacienta stanovují inkubací s lymfoblasty infikovanými EBV a následnou léčbou fluorescenčními protilátkami. V akutním období onemocnění se protilátky proti kapsidovému antigenu viru stanovují v titru 1:160 a vyšším.
Při použití řady dovážených komerčních testovacích systémů dokáže ELISA detekovat: protilátky proti obalovým protilátkám EBV, protilátky proti časnému antigenu EBV, celkové protilátky proti časnému antigenu EBV, stanovené v akutní fázi onemocnění jak v jádře, tak v cytoplazmě buněk, a omezené protilátky proti časnému antigenu EBV, stanovené v akutní fázi onemocnění jak v jádře, tak v cytoplazmě buněk, omezené protilátky proti časnému antigenu EBV, stanovené na vrcholu onemocnění pouze v cytoplazmě buněk, a protilátky proti jadernému antigenu EBV. Použití těchto testovacích systémů umožňuje diferenciální diagnostiku řady onemocnění spojených s EBV.
Po pozitivním výsledku ELISA testu, který odhalí protilátky proti EBV, se provede konfirmační imunoblotovací reakce, která stanoví přítomnost protilátek proti jednotlivým markerovým proteinům EBV (p-proteinům): p23, p54, p72 (přítomnost tohoto proteinu naznačuje možnost reprodukce EBV), p 138. Výše uvedené laboratorní metody se používají také ke sledování účinnosti léčby.
Citlivost virologických metod je 85-100 %, specificita je 100 %, doba studie je 2-5 dní. V praxi se často používá metoda přímé imunofluorescence (DIF) s polyklonálními nebo monoklonálními protilátkami proti HSV-1 a HSV-2. Metoda DIF je poměrně snadno reprodukovatelná v běžné klinické laboratoři, není nákladná, citlivost je nad 80 %, specificita je 90-95 %. Imunofluorescenční mikroskopie odhalila přítomnost cytoplazmatických inkluzí, morfologické znaky, procento infikovaných buněk ve stěrech-škrábech z močové trubice, cervikálního kanálu, děložního čípku a konečníku.
Metoda PIF poskytuje představu o morfologických vlastnostech buněk a změnách v lokalizaci antigenů HSV. Kromě přímých známek poškození buněk herpes viry (detekce specifické luminiscence) existují podle dat PIF i nepřímé známky herpes infekce:
- agregace jaderné hmoty, oddělení karyolemmy;
- přítomnost tzv. „děrových“ jader, kdy z buněčného jádra zůstává pouze jedna karyolemma;
- přítomnost intranukleárních inkluzí - Cowdryho tělísek.
Při provádění PIF lékař získává nejen kvalitativní, ale i kvantitativní hodnocení stavu infikovaných buněk, které jsme použili k posouzení účinnosti antivirové terapie acyklovirem (AC). Metodou PIF bylo tedy v dynamickém režimu vyšetřeno 80 pacientů s jednoduchým genitálním herpesem (GH). Ukázalo se, že pokud před léčbou acyklovirem mělo 88 % pacientů vysoké procento infikovaných buněk (50-75 % a více) v nátěrech, pak po jedné kúře acyklovirem byly zdravé buňky detekovány v nátěrech u 44 % pacientů, v 31 % případů byly zaznamenány jednotlivé infikované buňky a u 25 % pacientů bylo infikovaných buněk až 10 %.
Obsah infikovaných buněk v nátěrech (PIF reakce) u pacientů s genitálním herpesem léčených acyklovirem
Období nemoci |
Procentuální obsah v nátěrech |
|||||
Infikované buňky |
Normální |
|||||
Více než |
50–75 % |
40–50 % |
10 % |
Jednotlivé buňky v zorném poli |
||
Recidiva (před léčbou) | 25 % |
63 % |
12 % |
|||
(20) |
(50) |
(10) |
||||
Remise (po léčbě) | 25 % |
31 % |
44 % |
|||
(20) |
(25) |
(35) |
Při použití PIF a metody tečkové hybridizace po mnoho let bylo zjištěno, že výsledky studie se shodují téměř ve 100 % případů. Je třeba poznamenat, že pro zvýšení spolehlivosti diagnózy herpesu, zejména v případech subklinických a málo manifestních forem herpesu, se doporučuje v práci použít 2–3 metody laboratorní diagnostiky, a to zejména při vyšetřování těhotných žen, žen s nepříznivou porodnickou anamnézou a osob s nespecifikovanou gynekologickou diagnózou.
Při PCR diagnostice virových a bakteriálních infekcí urogenitálního traktu je tedy nutné vyhodnotit získané pozitivní výsledky s ohledem na anamnézu, přítomnost (nebo absenci) specifických klinických příznaků onemocnění. Pokud jsou chlamydie detekovány pomocí PCR, pak je v tomto případě vysoká pravděpodobnost infekce a otázky terapie lze odpovídajícím způsobem řešit. V případě detekce mykoplazmat (ureaplazmat), což jsou oportunní mikroorganismy, jsou k potvrzení diagnózy nutné další kultivační vyšetření, tj. výsev materiálu od pacienta na citlivé buněčné kultury. Pouze v případě pozitivních výsledků kultivační analýzy lze hovořit o laboratorním potvrzení diagnózy mykoplazmózy. Stejná metoda umožní v případě potřeby stanovit citlivost izolovaných mykoplazmat na často používané lékové formy (antibiotika, fluorochinolony atd.).
Současná infekce několika viry z čeledi Herpesviridae je možná. Často jsme u jednoho pacienta detekovali infekci viry HSV-1, HSV-2 a CMV. Pacienti s klinickými a laboratorními projevy sekundárního IDS (onkologičtí, onkologičtí, HIV-infikovaní pacienti) byli významně častěji infikováni několika herpesviry. Ukázalo se tedy, že klinické a imunologické poruchy progredující při HIV infekci jsou doprovázeny zvýšením počtu herpesvirů detekovaných metodou molekulární hybridizace. V tomto případě lze za prognosticky nejvýznamnější považovat komplexní simultánní detekci DNA typu HSV-1, CMV a HHV-6.